紧密连接蛋白与急性肾损伤论文_夏团红

紧密连接蛋白与急性肾损伤论文_夏团红

南华大学 421001

摘要:紧密连接蛋白(Claudins,cldns)是构成紧密连接复合物的主要成分之一,维持机体内环境的稳定,保持上皮细胞的极性[1]。它的表达水平及分布情况与多种疾病关系密切,如家族性、伴发高尿钙和肾脏钙质沉着的低镁血症,鱼鳞病和肾囊肿有直接关系[2-4],近年来发现与急性肾损伤的发生发展有着密切的关系,本文就cldns在急性肾损伤中相关研究进行综述。

关键词:紧密连接;Claudins;急性肾损伤

Cldns在肾脏组织中分布丰富,是肾小管上皮细胞间紧密连接的重要组成部分,对维持肾小管上皮细胞极性及调节离子渗透性发挥着重要的作用,如其结构及分布异常均可导致肾小管上皮细胞的生理功能失调,在疾病的发生发展中扮演着重要的角色[5];Cldns在肾脏组织中分布不但丰富,约20种左右,而且在肾单位的不同节段表达的 Cldns不同,在不同疾病中,Cldns的表达程度不一样,有的表达水平上调,有的无明显改变,而有的则表达下调,还有的合并分布发生异常[6-7]。探讨Cldns在肾脏的表达及分布对疾病的认识有着非常重要的作用。

1 cldns家族成员的结构和功能

Cldns是一种四分子交联体蛋白,属于紧密连接蛋白家族,目前在哺乳动物细胞中共发现了27个成员,分子量在21~28kD之间。 Cldns家族成员具有相同的分子结构,其肽链四次穿越细胞膜,NH2-和COOH-端位于细胞质中,细胞外的肽链形成两个跨膜的环,为细胞外1环和细胞外2环,细胞外1环在决定细胞间的跨上皮电荷抵抗和细胞外电荷的选择性[8-10],细胞外2环则目前有研究认为其折叠成螺旋-转角-螺旋型,在Cldns之间形成二聚体,介导Cldns间联系[11],并且也可充当产气荚膜梭状芽胞杆菌肠毒素受体,用于调节屏障功能和药物的运输[12]。

2 cldns在肾脏的分布及作用

Cldns在肾组织中分布丰富,约20种左右Cldns在肾组织中表达,且其在肾小管的不同节段的肾小管上皮细胞中表达不同,众所周知,肾单位的不同节段的功能不同,与Cldns的分布不同有很大关系[8]。在近曲小管,大量的盐和水重吸收,这部分主要以形成传导离子的孔隙的Cldns分布为主,如claudin-2、-17、-10等;在髓袢升支粗段最重要的功能是重吸收钙和镁,并调控钙敏受体,而这部分分布最丰富的则是 claudin-16和claudin-19[13];在远端肾肾单位钠离子是被动吸收,而氯离子则是主要吸收,因此,紧密连接蛋白形成对促进氯离子重吸收的孔道蛋白,形成电负荷,促进钠的重收,钾、酸的分泌,因此,此部分以claudin-3、-4、-7 和 -8分布[14]。

3 cldns在急性肾损伤表达及意义

急性肾损伤(acute kidney injury,AKI)是目前临床上最常见的疾病之一,发生率和死亡率高[15],目前有少量研究发现在缺血再灌注肾损伤、脓毒性导致的急性肾损伤等模型中发现紧密连接的结构不仅破坏,而且其蛋白质表达水平和mRNA表达水平发生了变化。

早期研究中,Kieran NE等[16]夹闭瑞士小鼠(重量在25至35g)双侧肾蒂30分钟后再灌注24小时杀死小鼠获取肾组织,微阵列基因芯片分析数据显示,在总共12488个表达的基因中,发现在cldns家族中claudin-1、-3、-7的表达水平发生了显著变化,并进一步进行RT -PCR检测,发现其分别上调了6.97、 4.71、9.24倍,并也验证了claudin-8和-6的表达水平无明显改变,其它claudin-2在微阵列基因芯片分析约下调1.9倍。Kieran NE等[16]同时建立了用叶酸(250 mg/kg)诱导小鼠急性肾小管坏死的模型,分别于应用叶酸后0,3,6,24和72小时杀死小鼠,微阵列基因芯片分析同样发现在cldns家族中claudin-1、-3、-7的表达水平发生了显著变化,同时应用RT -PCR检测验证,发现claudin-1随损伤时间的延长,mRNA表达水平逐渐上调,至6小时达到高峰,随后表达逐渐下调;claudin-3随损伤时间的推移,表达水平逐渐上调;claudin-7在6小时内无明显上调或下调,6小时后急剧上调,24小时后缓慢上调。在这两个实验中,虽未评价血清肌酐与各指标的相关性,但其血清肌酐水平均比基础值高出约在4至5倍以上。接着,Supavekin S等[17]夹闭小鼠单侧肾蒂45分钟后,分别于0、3、12或24小时再灌注的模型中,微阵列基因芯片分析中不仅发现了各凋亡基因的表达变化,而且同样也发现了claudin-7的表达水平发生了变化。

近期Eadon MT等[7]在内毒素诱导的急性肾损伤的动物模型中,进一步验证了cldns在急性肾损伤中的表达发生了变化(claudin-1、-3表达上调,Claudin-4 蛋白质表达水平下调,而其mRNA表达水平上调,Claudin-8蛋白质表达无明显改变,而mRNA表达水平下调), 在急性肾损伤中,cldns的表达水平不仅发生了变化,而且其结构及分布发生了变化,从而导致肾单位的功能发生异常,导致蛋白尿,血清肌酐、尿素氮水平上长升,在Reyes JL等[18]在重金属导致的急性肾损伤的论述中,认为重金属是通过氧化应激导致的紧密连接蛋白的分布异常。在环孢素诱导的急性肾损伤大鼠模型中[19],环孢素通过氧化应激导致一些cldns的表达水平发生了变化,如claudin-2mRNA和蛋白质表达水平均下调,而claudin-5的表达水平无明显改变。

近期Gonzalez JE等[20]在体外应用过氧化氢诱导的肾小管上皮细胞损伤中,验证了部分(claudin-1、claudin-2)的表达水平及定位发生了变化,从而影响肾小管上皮细胞的功能状态。

期刊文章分类查询,尽在期刊图书馆

结语

因此,在急性肾损伤中,cldns的表达水平及定位发生了变化,进而影响肾脏的功能状态,但是在急性肾损伤中并不是所有cldns的表达均发生了变化,因此,对cldns的进一步研究,有利于对急性肾损伤的机制深入探讨。

参考文献:

[1]Krug SM, Schulzke JD, Fromm M.Tight junction, selective permeability, and related diseases[J].Semin Cell Dev Biol. 2014 Dec;36:166-76.

[2]Hou J, Goodenough DA.Claudin-16 and claudin-19 function in the thick ascending limb[J].Curr Opin Nephrol Hypertens. 2010 Sep;19(5):483-8.

[3]Hadj-Rabia S, Baala L, Vabres P, et al. Claudin-1 gene mutations in neonatal sclerosing cholangitis associated with ichthyosis: a tight junction disease[J].Gastroenterology. 2004 Nov;127(5):1386-90.

[4]Yu ASL, Kanzawa SA, Usorov A, et al. Tight junction composition is altered in the epithelium of polycystic kidneys[J] J Pathol, 2008, 216(1): 120-128.

[5]Zhang L, Li ZH, Deng X,et al.Expression of tight junction protein claudin-2 in renal tissues and its significance in children with acute kidney injury[J].Zhongguo Dang Dai Er Ke Za Zhi,2014,16(4):361-365.

[6]Yu AS.Claudins and the kidney[J].J Am Soc Nephrol. 2015 Jan;26(1):11-9.

[7]Eadon MT, Hack BK, Xu C, et al.Endotoxemia alters tight junction gene and protein expression in the kidney[J].Am J Physiol Renal Physiol. 2012 Sep 15;303(6):F821-30.

[8]Hwang I, Yang H, Kang HS, et al.Spatial expression of claudin family members in various organs of mice[J].Mol Med Rep. 2014 May;9(5):1806-12.

[9]Will C, Fromm M, Müller D.Claudin tight junction proteins: novel aspects in paracellular transport[J].Perit Dial Int. 2008 Nov-Dec;28(6):577-84.

[10]Lee DB, Huang E, Ward HJ.Tight junction biology and kidney dysfunction[J].Am J Physiol Renal Physiol. 2006 Jan;290(1):F20-34.

[11]Piontek J, Winkler L, Wolburg H, et al. Formation of tight junction: determinants of homophilic interaction between classic claudins[J]. FASEB J, 2008, 22: 146-158.

[12]Fujita K, Katahira J, Horiguchi Y, et al. Clostridium perfringens enterotoxin binds to the second extracellular loop of claudin-3, a tight junction integral membrane protein[J]. FEBS Lett, 2000, 476: 258-261.

[13]Hou J.Lecture: New light on the role of claudins in the kidney[J].Organogenesis. 2012 Jan-Mar;8(1):1-9.

[14]张布衣,姚根有.紧密连接蛋白claudins的研究进展[J].国际病理科学与临床杂志,2006,26(1):14-17

[15]段绍斌, 张辉, 彭佑铭. 急性肾损伤的病因与防治[J]. 中国血液净化, 2010, 9(7): 349-351.

[16]Kieran NE, Doran PP, Connolly SB, et al.Modification of the transcriptomic response to renal ischemia/reperfusion injury by lipoxin analog[J].Kidney Int. 2003 Aug;64(2):480-92.

[17]Supavekin S, Zhang W, Kucherlapati R,et al.Differential gene expression following early renal ischemia/reperfusion[J].Kidney Int. 2003 May;63(5):1714-24.

[18]Reyes JL, Molina-Jijón E, Rodríguez-Muñoz R, Bautista-García P, Debray-García Y, Namorado Mdel C.Tight junction proteins and oxidative stress in heavy metals-induced nephrotoxicity[J].Biomed Res Int. 2013;2013:730789.

[19]Trujillo J, Molina-Jijón E, Medina-Campos ON, et al.Renal tight junction proteins are decreased in cisplatin-induced nephrotoxicity in rats[J].Toxicol Mech Methods. 2014 Oct;24(7):520-8.

[20]Gonzalez JE, DiGeronimo RJ, Arthur DE, et al.Remodeling of the tight junction during recovery from exposure to hydrogen peroxide in kidney epithelial cells[J].Free Radic Biol Med. 2009 Dec 1;47(11):1561-9.

作者信息:南华大学在读硕士研究生

论文作者:夏团红

论文发表刊物:《健康世界》2015年12期

论文发表时间:2016/5/24

标签:;  ;  ;  ;  ;  ;  ;  ;  

紧密连接蛋白与急性肾损伤论文_夏团红
下载Doc文档

猜你喜欢