沙门菌定性检验方法的关键环节分析论文_邵雪全

资兴市食品药品工商质量监督管理检验检测中心 423400

【摘 要】目的:探索分析沙门菌定性检验方法的关键环节。方法:选取相关计划中提供的样品,当做此次研究的对象,对原始标本做第一次增菌和二次增菌。对三种增菌液做分离培养。实施荧光PCR试验,比较第一次增菌和二次增菌效果。结果:15个分离培养方法的样品中,有12件检查出沙门菌。实时荧光PCR方法的样品中,有14件检查出该种细菌。结论:检测沙门菌方法优化后,开展大规模样本的筛查和检测时,运用直接检测增菌方法或者使用SC二次增菌鉴定的分离培养方法,有助于将工作量减少,避免了资源浪费,具有推广应用价值。

【关键词】沙门菌;定性检验;关键环节

全球范围内,食源性的疾病逐渐增多,此种背景下,人们更加关注食品问题,对于食品中一些细菌的检验工作,变得更加重视,在众多病菌中,沙门菌是引起疾病的食源性病菌[1],其检测的灵敏性,对于食品细菌检测工作有着积极意义。下面就沙门菌定性检验方法的关键环节的相关试验,做详细报道:

1.资料与方法

1.1基础资料

选用样品:将相关鉴定计划提供的考核样品为研究对象,一共有十五件,状态是冻干状,白色微球,直径大约是3mm左右。

仪器和试剂:荧光定量PCR仪器;VITEK 生化试剂、科玛嘉沙门显色琼脂、亚硫酸铋、亚硒酸盐胱氨酸增菌液、诊断血清、三糖铁琼脂、木糖赖氨酸胆酸盐琼脂、四硫酸钠煌绿增菌液、缓冲戴白胨水。

1.2方法

分离细菌的培养鉴定:以PT为指导要求,操作原则为国际标准法,然后实施检验工作。第一,第一次增菌:操作要在无菌条件下,选择计量是1ml的BPW,等到其将样品全部溶解,向其加入10ml的BPW,培养环境的温度要保证为36℃±1℃,培养时间为8h-18h。第二,开始增菌,对上述培养样品进行轻轻地晃动,然后选择其的1ml。放到10ml的TTB里面,培养环境的温度保持在42℃±1℃,培养时间在18h-24h之间。同一时间,选取第一步中样品1ml,放到10ml的SC里面培养环境的温度保持在36℃±1℃,培养时间在18h-24h之内。第三,分离,分别从上面地方两种增菌液取出1环,依次放到三种试验板上,包括CAS显色板、XLD琼脂板、BS琼脂板,分别将其放置在温度是36℃±1℃的环境中,继续培养,时间保证18h-24h。观察出现菌落的具体情况,包括菌落形态和生长情况。第四,生化试验,选择出多于两个的可疑菌落和典型的菌落,分别把这些菌落接种到三糖铁琼脂中,以斜面划线为基础,对其底层穿刺。对于接种针,也不需要直接灭菌,然后将这些接种到营养琼脂的平板,培养环境的温度保持在36℃±1℃,继续培养,具体时间是18h*24h。在营养琼脂平板基础上,选择出一些疑似的菌落,然后按照VITEK2 Compact 中具体内容继续操作,实施试验活动,判定试验结果。如果结果达到生化三塘初筛标准,就可以用到VITEK系统,去鉴定生化结果。然后实施沙门多价血清凝集的试验,去判定最终的结果。

实时荧光PCR方法:第一,DNA模板制作出来,分别选取每种菌液,计量为1ml,具体指标是8000rpm/min,以5分钟的时间做离心,将上清清除干净,使用1ml的DEPC加入其中,将其洗涤并沉淀。再次将指标设定为8000rpm/min,以5分钟的时间做离心,将上清清除干净,使用100DEPC和水加入,将其放置在沸水下,保持加热10分钟。将指标设定为12000rpm/min,以10分钟为离心,将上清清除干净,准备以后使用。第二,荧光PCR反应,25的反应体系范围中包含了12.52 PCR的反应混合物,上游和下游引物标准是0.2,DNA模板是2。进行PCR反应具体条件:温度确保在95℃之下,反应时间保证有10分钟;然后95℃之下保证有15秒;60℃之下保证有1分钟,以这样的顺序循环40次。各个样本呈现出了一定扩增曲线,为s型,Ct值增加,菌液浓度却减小,并且Ct值范围在10-35之间,这样结果就是说诊断是阳性,如果不是这样,结果则是诊断是阴性[2]。

1.4统计方法

采用SPSS 21.0统计学软件对数据进行分析,表示计量资料的方法为,采用t检验,(n)表示计数资料中的例数、(%)表示百分数,采用x2检验,以P<0.05为差异有统计学意义。

2.结果

2.1分析分离培养方法下检测的结果

经过BPW的第一增菌,全部试验液全部呈现出不种程度浑浊状态,表示有菌落存在。经过了SC以及TTB的二次增菌,实验结果与第一次相比,并没有差异,不具有统计学意义。第一次增菌方法下,全部样品中有12件样品出现了典型菌落,数据见表1。

表1 样品种菌落的分布

3、讨论

沙门菌常见的一种食源性的能够导致疾病的细菌,现今对于其的检测方法是国际标准检测方法,需要耗费的时间比较长,通常情况下,会需要4天到5天的时间,并且必须要满足两种增菌液与两个不同培养温度的条件,这样就需要花费更多的物力和人力以及材料。

此次研究中使用了相关计划中准备的15件样品,将其做为试验对象,样品来源非常可靠,初始浓度确定后,提供出了可以对增菌条件进行评价的不同浓度样品。另外此次研究。用到了荧光PCR检测的方法,达到了有效评价两种不同增菌液的实际增菌效果,以精确地检测出细菌DNA定量为实际基础,可以正确反映出增殖效率和菌液浓度,表明了这种方法有着明显特异性,灵敏度较高,可靠性好,同传统模式的分离培养方法比较,在增菌效果区分上,显示出一定优势。以文献[3]中提到的判断结果有着一致性。

在一般试验中,必须要注意食品样品具有的物理性质,本身具有致病菌,并且受到其他细菌影响,一不小心试验结果就会出现偏差,检测正确率受到一定影响[4]。但是在BTW之下,能够对于样品做富集的增菌培养,对于增菌液的PH值可以做适当调整,使其降低或者升高,对其他杂菌生产繁殖进行控制,为靶向菌的增殖提供良好环境条件。但依然存在缺陷,那就是当样品受到了辐射或者冷伤等物理损伤时,这种效果也不够明显,因此需要二次增菌,像SC、TTB,才能使得样品的达到沙门菌平板灵敏度的要求。

综上所述,有良好增菌是提升该菌检测灵敏度的重要环节,对于食品中该病菌来说,运用何种检测方法能够提升检测的实用性和科学性是非常重要的,因为此次研究中的样本数据有限,因此需要更多试验和研究人员,对沙门菌定性检验方法关键环节做深入分析。

参考文献:

[1]曲梅,张新,吕冰,等. 沙门菌定性检验方法关键环节评价[J]. 中国卫生检验杂志,2014(19):2743-2745..

[2]肖剑,陈娟丽,张彬彬,等. 沙门氏菌快速检测板在食品检测中的应用研究[J]. 食品安全质量检测学报,2016,7(11):4667-4671.

[3]王杰,陈颖钰,彭清洁,等. 沙门菌检测方法研究进展[J]. 动物医学进展,2016,37(4):94-98.

[4]韦宏珍. 预防性健康体检中沙门菌检验方法的探导[J]. 检验医学与临床,2017,14(A01):117-118.

论文作者:邵雪全

论文发表刊物:《中国蒙医药》2018年第6期

论文发表时间:2018/8/17

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